RNA提取步驟如下:
1、準備10ml離心管,121℃滅菌20min,烘箱烘干5h,將管道烘干備用;
2、將研缽、研棒、勺子用錫紙包好,200℃烘箱烘干4-6小時,取出烘干的研缽等冷卻;
3、將CTAB提取液放入65℃水浴鍋中加熱開水浴鍋65℃;
4、取出10ml離心管,每管加入4mlCTAB溶液,加入80微升基乙醇(2%),編號,每個樣品兩管提取液;
5、將樣品加熱到65℃,取出研缽開始準備磨樣;
6、磨好的樣品每管加1g左右,在漩渦儀上混合均勻(可長一點);
7、一組樣品磨好后,再漩渦一次,將5分鐘放入65℃水浴鍋中。;
8、每管加4ml氯仿:異戊醇(v:v=24:1)在漩渦儀上混合均勻;
9、15℃,10000rpm,10min;
10、將上清液吸入新管中,加入4ml氯仿/異戊醇,在漩渦儀上混合均勻;
11、15℃,10000rpm,10min;
12、吸上清液(盡量不吸多,保證RNA質(zhì)量),兩管合一管;
13、加1/5體積的12M氯化鋰;1/4體積的10M氯化鋰。
14、放置4℃冰箱過夜,>12小時
15、第二天,開離心機預冷4℃,開65℃水浴鍋,加熱SSTE65℃;
16、4℃,10000rpm,30min;
17、將上清液倒掉,輕輕吸出殘留的上清液,加入400微升的SSTE;
18、在1.5ml離心管中反復吸氣,將液體吸出;
19、在旋渦儀上加入400微升氯仿/異戊醇;
20、10000rpm,5min;(4℃)
21、將上清液吸出,加入新的1.5ml離心管,加入2倍-20℃放置的無水乙醇;
22、上下顛倒混合均勻,-70℃放置30分鐘;打開4℃預冷的小離心機,到電泳室做膠;
23、取出-70℃樣品;
24、4℃,10000rpm,20min;
25、將上清液倒掉,在離心機中甩掉;
26、吸出殘留液體;
27、將沉淀物放在通風柜上晾干;
28、打開紫外線分光光度計,調(diào)整到RNA測試方法;
29、DEPC水溶解沉淀,每管加15-20微升,開始準備電泳檢測和分光光度計檢測;
30、電泳檢測:4微升DEPC水+1微升6微升×LoadingBuffer+1微升樣品;
31、光度計檢測:69微升DEPC水+1微升樣品;
32、A260/A280=1.8-2.0
33、電泳結(jié)果為兩條帶:亮度為上條:下條=2條:1
34、攪拌制作注意事項固定液可以使蛋白質(zhì)變性,不再擴散,所以一定要多換一次;電泳后一定要小心取膠、固定、染色,直到干膠板,防止膠水損壞。